Wikipedia

Kristallviolett

organische Verbindung, Farbstoff

Kristallviolett (nach dem botanischen Namen des Enzians auch Gentianaviolett beziehungsweise Enzianviolett genannt, nach dem Colour Index C.I. Basic Violet 3) ist eine organisch-chemische Verbindung mit der Summenformel C25H30N3Cl. Es gehört zur Gruppe der Triphenylmethanfarbstoffe, die eine wichtige kommerzielle Farbstoffklasse bilden, und war mit einer der ersten synthetischen Farbstoffe. Der Name Enzianviolett bezieht sich auf die Farbe, die den Blütenblättern bestimmter Enzianarten ähnelt. In festem Zustand hat es einen goldgrünen, metallischen Glanz, in Wasser gelöst erscheint es dunkelviolett. Kristallviolett wurde 1883 zum ersten Mal gezielt hergestellt.

Strukturformel
Struktur von Kristallviolett
Allgemeines
Name Kristallviolett
Andere Namen
  • {4-[4,4′-Bis(dimethylaminophenyl)benz­hydryliden]cyclohexa-2,5-dien-1-yliden}dimethylammoniumchlorid (IUPAC)
  • C.I. Basic Violet 3
  • C.I. 42555
  • Hexamethyl-p-rosanilinchlorid
  • Hexamethyl-p-rosaniliniumchlorid
  • Gentianaviolett
  • Methylviolett 10B
  • Methylrosanilium
  • Methylrosaniliumchlorid
  • Methylrosanilin
  • blaues Pyoktanin
Summenformel C25H30ClN3
Kurzbeschreibung

grüner, geruchloser Feststoff[1]

Externe Identifikatoren/Datenbanken
CAS-Nummer
EG-Nummer 208-953-6
ECHA-InfoCard 100.008.140
PubChem 11057
ChemSpider 10588
DrugBank DBSALT000604
Wikidata Q420705
Eigenschaften
Molare Masse 407,99 g·mol−1
Aggregatzustand

fest[1]

Dichte

1,19 g·cm−3 (20 °C)[1]

Schmelzpunkt

189–194 °C[1]

Löslichkeit

wenig in Wasser (10 g·l−1 bei 20 °C)[1]

Sicherheitshinweise
GHS-Gefahrstoffkennzeichnung aus Verordnung (EG) Nr. 1272/2008 (CLP),[2] ggf. erweitert[1]
Gefahrensymbol Gefahrensymbol Gefahrensymbol Gefahrensymbol

Gefahr

H- und P-Sätze H: 302​‐​318​‐​351​‐​410
P: 202​‐​273​‐​280​‐​301 312​‐​305 351 338​‐​308 313[1]
Soweit möglich und gebräuchlich, werden SI-Einheiten verwendet.
Wenn nicht anders vermerkt, gelten die angegebenen Daten bei Standardbedingungen (0 °C, 1000 hPa).

Es wird unter anderem in Druckfarben, zur Herstellung von dokumentenechten Stiften, Stempel- und hektografischen Farben sowie zum Färben von Papier verwendet. Als histologisches Färbemittel und in der Gram-Färbung wird es zur Klassifizierung von Bakterien verwendet. In der Tiermedizin wurde Kristallviolett in einer Vielzahl von Anwendungen eingesetzt.

Kristallviolett besitzt klinisch nützliche Merkmale und verschiedene pharmakologische Wirkungen. Es weist antibakterielle, antimykotische und anthelmintische Eigenschaften auf und war lange als topisches Antiseptikum von Bedeutung. Der Farbstoff, der wegen seines geringen Preises, seiner hohen Stabilität und Verträglichkeit häufig in der Medizin eingesetzt wurde, ist durch modernere Arzneimittel weitgehend verdrängt worden.

Nomenklatur

Bearbeiten

Der Name Kristallviolett wurde von Alfred Kern gewählt, da andere Methylviolettfarbstoffe nur als amorphe Pulver bekannt waren, während sich Kristallviolett vor allem durch seinen kristallinen Zustand und durch seine einheitliche Zusammensetzung auszeichnete.[3] In der Literatur werden die Namen Kristallviolett, Gentianaviolett, auch Gentian Violett, im englischen Gentian violet, und Methylviolett 10B zum Teil synonym, zum Teil für verschiedene Stoffe oder Mischungen verwendet.[4]

Die Bezeichnung Gentianaviolett wird oft für pharmazeutische Präparate verwendet. Nach dem Europäischen Arzneibuch darf Kristallviolett bis zu 10 % des Pentamethylderivats Basic Violet 1 enthalten, das verfahrensbedingt meist in größeren Mengen in Kristallviolett vorhanden ist.[5] Nach dem Arzneibuch der Vereinigten Staaten von Amerika muss der Gehalt an Kristallviolett mindesten 96 % betragen.[6] Michlers Keton sowie Schwermetallverunreinigungen durch die verwendeten Katalysatoren dürfen nur in geringen Mengen vorhanden sein.[5]

Geschichte

Bearbeiten
 
Alfred Kern (um 1890)

Kristallviolett fiel zunächst als einer der Bestandteile von Methylviolett an, einem Farbstoff, der erstmals 1861 von Charles Lauth synthetisiert wurde.[7] Dabei handelte es sich um ein Gemisch aus tetra-, penta- und hexamethylierten Pararosanilinen. Ab 1866 wurde Methylviolett von der Firma Poirrier et Chappat in Saint-Denis hergestellt und unter dem Namen „Violet de Paris“ vermarktet.[8]

Reines Kristallviolett wurde erstmals 1883 in reiner Form von Alfred Kern synthetisiert, der in Basel bei der Firma Bindschedler & Busch arbeitete.[3] Um die schwierige Synthese mit Phosgen zu optimieren, arbeitete Kern mit dem deutschen Chemiker Heinrich Caro bei der BASF zusammen.[9]

 
Hans Christian Gram (vor 1900)

Der Name „Enzianviolett“ wurde möglicherweise von dem deutschen Apotheker Georg Grübler eingeführt, der 1880 in Leipzig eine Firma gründete, die sich auf den Vertrieb von Färbereagenzien für die Histologie spezialisierte.[10] Die von Grübler vertriebene Kristallviolettfärbung enthielt wahrscheinlich eine Mischung aus methylierten Pararosanilinfarbstoffen.[11] Die Färbung erwies sich als populär und wurde 1884 von Hans Christian Gram zum Färben von Bakterien verwendet. Er schrieb die Anilin-Kristallviolett-Mischung Paul Ehrlich zu. Die selektive Anfärbung von Mikroorganismen in einem Wirtsorganismus mit verschiedenen Farbstoffen führte Paul Ehrlich zu der Annahme, dass es möglich sein müsste, Mikroorganismen abzutöten, ohne den Wirtsorganismus zu schädigen. Aus den Arbeiten mit Farbstoffen entwickelte Ehrlich die Begriffe „selektive Toxizität“ und „Chemotherapie“.[12] Grüblers Kristallviolett war wahrscheinlich sehr ähnlich, wenn nicht identisch, mit dem Methylviolett von Lauth, das 1875 von Victor André Cornil als Färbemittel verwendet wurde.

Obwohl der Name Enzianviolett weiterhin für histologische Färbungen verwendet wurde, fand er in der Farbstoff- und Textilindustrie keine Verwendung. Die Zusammensetzung des Farbstoffes war nicht definiert und verschiedene Lieferanten verwendeten unterschiedliche Mischungen. 1922 setzte die Biological Stain Commission ein Komitee unter dem Vorsitz von Harold Conn ein, um die Eignung der verschiedenen kommerziellen Produkte zu untersuchen.[13] In seinem Buch „Biological Stains“ beschreibt Conn Kristallviolett als „eine schlecht definierte Mischung violetter Rosaniline“.

Die Entdeckung der antiseptischen Eigenschaften von Kristallviolett wird dem deutschen Augenarzt Jakob Stilling zugeschrieben. Er veröffentlichte 1890 eine Monographie über die bakterizide Wirkung einer Lösung, die er „Pyoktanin“ nannte und bei der es sich wahrscheinlich um eine dem Kristallviolett ähnliche Mischung von Anilinfarbstoffen handelte.[14] Er ging eine Partnerschaft mit E. Merck & Co. ein, um „Pyoktanin caeruleum“ als Antiseptikum zu vermarkten.[15]

Carl Benda wies 1898 durch Färbung mit Kristallviolett Hunderte von Körnchen im Cytoplasma eukaryotischer Zellen nach und nannte sie Mitochondrien, von griechisch mitos, Faden, und khondrion, Körnchen.[16] Im Jahr 1902 stellten Wilhelm von Drigalski und Heinrich Conradi fest, dass Kristallviolett zwar das Wachstum vieler Bakterien hemmt, jedoch nur eine geringe Wirkung auf Bacillus coli (Escherichia coli) und Bacillus typhi (Salmonella typhi), beides gramnegative Bakterien, hat.[17] Eine sehr viel detailliertere Studie über die Wirkung von Grüblers Kristallviolett auf verschiedene Bakterienstämme wurde 1912 von John Churchman veröffentlicht. Er stellte fest, dass die meisten grampositiven (angefärbten) Bakterien empfindlich auf den Farbstoff reagierten, während die meisten gramnegativen (nicht angefärbten) Bakterien unempfindlich waren, und beobachtete, dass der Farbstoff eher bakteriostatisch als bakterizid wirkt.[18]

In der ersten Hälfte des 20. Jahrhunderts wurde Kristallviolett zur Behandlung einer Vielzahl von Krankheiten eingesetzt, nach der Entdeckung und großtechnischen Herstellung von Sulfonamiden und Penicillin in den 1940er Jahren jedoch kaum noch verwendet. Die Forschung konzentrierte sich stattdessen auf die Entwicklung neuer Klassen von Antibiotika. Mit dem Auftreten von Antibiotikaresistenzen gewann jedoch die Anwendung von Kristallviolett in der Dermatologie und zur Bekämpfung von Sepsis wieder an Bedeutung.[19]

Gewinnung und Darstellung

Bearbeiten

Ein ökonomisches Verfahren zur Herstellung von Kristallviolett beruht auf der 1883 von Kern und Caro patentierten Umsetzung von N,N-Dimethylanilin (1) mit Phosgen (2) in einem Eintopfverfahren.[20] In Gegenwart von Zinkchlorid wird primär Michlers Keton (4,4′-Bis-dimethylamino-benzophenon) (3) gebildet, das ohne Zwischenisolierung mit Phosgen zur Zwischenstufe 4 umgesetzt wird, die mit N,N-Dimethylanilin zum Kristallviolett (5) reagiert.[21][22]

 
Darstellung von Kristallviolett

Alternativ kann Michlers Keton (1) mit N,N-Dimethylanilin (2) in Gegenwart von Phosphorylchlorid kondensiert werden. Dabei findet eine elektrophile Substitution am N,N-Dimethylanilin in para-Stellung durch den Kohlenstoff der Carbonylgruppe von Michlers Keton statt. Phosphorylchlorid dient als Elektronenpaarakzeptor für den Sauerstoff der Carbonylgruppe des Ketons. Das Kohlenstoffatom ist dadurch positiv geladen und damit in der Lage, den Aromaten elektrophil anzugreifen. Aus der entstehenden Carbinolbase (3) wird anschließend Wasser eliminiert.[9]

 
Darstellung von Kristallviolett

Auch die ursprünglich von Kern entwickelte Verfahrensvariante geht von Michlers Keton (1) aus. Dabei entsteht zunächst durch die Reduktion mit Zinkstaub oder Natriumborhydrid das sogenannte Michlers Hydrol, Bis[4-(dimethylamino)phenyl]methanol (2). Durch Kondensation des Hydrols mit N,N-Dimethylanilin (3) entsteht die Leukobase (4).[3] Durch Oxidation der Leukobase in Gegenwart von Salzsäure entsteht Kristallviolett (5).

 
Darstellung von Kristallviolett

Die Leukobase kann auch durch die Umsetzung von Dimethylaminobenzaldehyd mit zwei Moläquivalenten N,N-Dimethylanilin erhalten werden.[23]

Eine weitere Darstellung in einem Eintopfverfahren erfolgt durch Umsetzung von N,N-Dimethylanilin (1) mit Formaldehyd (2). Formaldehyd wird in situ aus Paraformaldehyd erzeugt und es entsteht zunächst Michlers Base (3), die oxidativ durch Luftsauerstoff und Chloranil (6) in Gegenwart des Eisenkomplexes des Dihydrodibenzotetraaza[14]annulens (5) als Katalysator mit N,N-Dimethylanilin zu Kristallviolett (4) umgesetzt wird.[23][24]

 
Darstellung von Kristallviolett

Kristallviolett wird in Indien, China und in gewissem Umfang in den USA hergestellt. Die Produktionsmengen in China und Indien sind nicht bekannt, in den USA wurden in den Jahren 1986 und 1990 Produktionsmengen zwischen 227 und 454 Tonnen angegeben. Kristallviolett wird in der Europäischen Union nicht hergestellt, jedoch importierte die EU im Jahr 2012 zwischen 210 und 230 Tonnen Kristallviolett.[25]

Eigenschaften

Bearbeiten

Physikalische Eigenschaften

Bearbeiten
  • Kristallviolett als Feststoff und in wässriger Lösung
  •  
    Kristallviolett-Nadeln mit gold-grünlichem, metallischem Glanz
  •  
    Wässrige Lösung von Kristallviolett

Kristallviolett liegt meist in Form feiner, metallisch-gold glänzender Nadeln vor. Mit neun Molekülen Kristallwasser bilden sich bronzefarbene Kristalle, die wasserfreie Modifikation besteht aus mehrfarbig schillernden Kristallen.[3] Es löst sich in Wasser und anderen polaren Lösungsmitteln mit intensiv violetter Farbe mit einem Absorptionsmaximum bei 590 Nanometern. Die absorbierte Spektralfarbe ist Gelb-Grün, die Komplementärfarbe dazu Violett.[26] Das grundlegende Chromophor des Kristallvioletts ist das Triphenylmethyl-Kation, die drei Dimethylaminogruppen sind die Auxochrome. Das Absorptionsspektrum zeigt neben den Absorptionsmaxima eine Schulterbande. Diese Besonderheit des Absorptionsspektrums wird durch die Existenz zweier in wässriger Lösung im Gleichgewicht vorliegenden Grundzustandsisomere erklärt, die planare und die pyramidale Form.[27]

 

Aus der Kristallstrukturanalyse geht hervor, dass Kristallviolett im festen Zustand eine propellerartige Struktur aufweist, bei der die aromatischen Ringe um 32 ° gegenüber der zentralen horizontalen Ebene gedreht sind.[28]

Das Kristallviolettkation wird als Resonanzhybrid betrachtet, bei dem die positive Ladung auf die drei Stickstoffatome sowie das zentrale Kohlenstoffatom delokalisiert ist. Der Einfachheit halber wird meist nur eine Grenzstruktur angegeben.[22] Als Molekülsymmetrie besitzt das Kristallviolettmolekül die Punktgruppe D3.[29]

Chemische Eigenschaften

Bearbeiten

Bei Zugabe von starken Säuren zur wässrigen Lösung durchläuft Kristallviolett eine Reihe von Farbumwandlungen. Dieses halochrome Verhalten erlaubt seinen Einsatz als pH-Indikator bei der wasserfreien Gehaltsbestimmung von schwachen Basen. Wird eine Lösung von Kristallviolett leicht angesäuert, erfolgt ein Farbumschlag von Violett nach Grün, weil das Auxochrom des dritten Kernes, die Diemthylaminogruppe, seine elektronenliefernde Fähigkeit und damit seine Farbrelevanz durch Addition eines Protons verliert. Ein stärkeres Ansäuern führt zu einer gelben Verbindung, bei der ein weiteres Auxochrom durch Protonierung deaktiviert wird. Die quaternisierten Stickstoffatome sind nicht mehr mesomeriefähig und verlieren somit ihren bathochromen Effekt.[30] In der gelben Form tragen alle drei Stickstoffatome eine positive Ladung, von denen zwei protoniert sind, während die grüne Farbe einer Form des Farbstoffs entspricht, in der zwei der Stickstoffatome positiv geladen sind. Bei neutralem pH-Wert gehen die beiden zusätzlichen Protonen an die Lösung verloren, so dass nur noch eines der Stickstoffatome positiv geladen ist. Die pKa für den Verlust der beiden Protonen betragen etwa 1,15 und 1,8.[26]

Bei Zugabe von Natronlauge zu einer stark verdünnten Kristallviolettlösung entfärbt sich die Lösung langsam. Hierbei lagert sich ein Hydroxidion an das in einer mesomeren Grenzform im Zentrum des Moleküls gebildete Carbeniumion an. Zunächst reagiert die Flüssigkeit stark alkalisch und leitet den elektrischen Strom. Sie entfärbt sich und das nahezu unlösliche Kristallviolettcarbinol scheidet sich ab. Schließlich reagiert die Lösung nicht mehr alkalisch, während gleichzeitig ihre elektrische Leitfähigkeit abnimmt. Dieses Verhalten entspricht dem von Säuren, die in Pseudosäuren übergehen. Kristallviolettcarbinol wird daher als Pseudobase bezeichnet.[31] Diese Reaktion lässt sich reaktionskinetisch mit einem Photometer untersuchen. Wenn die Konzentration des Kristallvioletts viel kleiner ist als die Konzentration der Natronlauge läuft die Reaktion pseudo-erster Ordnung ab.[32]

 
Indikatoreigenschaften von Kristallviolett

Mit einer Iod-Kaliumiodid-Lösung bildet Kristallviolett einen Iod-Kaliumiodid-Farbstoff-Charge-Transfer-Komplex, der bei der Färbemethode von Bakterien nach Gram Verwendung findet.[33] Durch die Umsetzung von Natriumtetraphenylborat mit Kristallviolett in Methanol bei Raumtemperatur entsteht unter Salzmetathese Kristallvioletttetraphenylborat, eine kristalline, grün-violette Substanz mit einem Schmelzbereich von 196 bis 198 °C.[34] Durch die Fällung von Kristallviolett mit Molybdatophosphorsäure wird das Druckfarbenpigment C.I. Pigment Violet 39 erhalten.[35] Durch Ethylierung von Kristallviolett mit Bromethan erhält man Ethylgrün.[36] Die Reduktion von Kristallviolett mit Zinkstaub in Pyridin führt zu einer gelb-roten Lösung des Kristallviolettradikals, das an Luft sofort wieder zu Kristallviolett oxidiert wird.[37]

Verwendung

Bearbeiten
 
Eloxierte Aluminium­ringe, violett eingefärbt

Im Jahr 2001 entfiel die weltweite Nachfrage nach Triphenylmethanfarbstoffen wie Kristallviolett 55 % bis 60 % auf Druckfarben, etwa 20 % auf Beschichtungen, etwa 15 % auf Kunststoffe und der Rest auf Bereiche wie Textilien. Kristallviolett wurde zeitweise zum Färben von Wolle und als Purpurfarbstoff für Textilien wie Baumwolle, Seide und Nylon und mit Polyacrylnitril modifiziertes Nylon verwendet. Aufgrund seiner schlechten Echtheitseigenschaften, der leichten Auswaschbarkeit, der geringen UV-Beständigkeit und seiner Toxizität ist es nur bedingt zum Färben von Textilien geeignet.[38][39]

Kristallviolett gehört zur Gruppe der funktionellen Farbstoffe, deren spezifische Anwendungen nicht auf ihren ästhetischen Farbeigenschaften beruhen.[40] Es wird als Farbstoff in Farbbändern, Lacken, Druckfarben und in Kopierstiften sowie zum Färben von Kunststoffen, Fetten, Ölen und Wachsen verwendet.[38] Kristallviolett eignet sich zur elektrolytischen Einfärbung von anodisierten Oberflächen aus eloxiertem Aluminium oder Aluminiumlegierungen. Aufgrund seiner positiven Ladung lagert sich das Kristallviolettkation dabei während der negativen Halbwelle des Wechselstroms in den Porenöffnungen der Oberflächenoxidschicht ab.[41]

In Tierlaboratorien werden Versuchstiere zum Teil mit Kristallviolett markiert, um einzelne Versuchstiere zu identifizieren und gegebenenfalls in Gruppen zusammenzufassen. Die Fellfärbung bleibt mehrere Wochen erhalten.[42] Farbloses Kristallviolettcarbinol setzt bei Bestrahlung mit ionisierender und Ultraviolettstrahlung das farbige Kristallviolettkation frei. Es kann daher in Filmen zur Messung der Strahlendosis verwendet werden, da die optische Dichte des bestrahlten Films proportional zur absorbierten Strahlung ist.[43]

Matrizendruck

Bearbeiten
 
Mit einem Matrizendrucker hergestellte Abzüge mit dem typisch blau-violetten Farbton der Schrift

Aufgrund seiner hohen Farbstärke eignete sich Kristallviolett für den Einsatz im Matrizendruck oder Ormigverfahren, einem bis zum Aufkommen von Fotokopierern verbreiteten Vervielfältigungsverfahren für Dokumente. Dazu wurde Kristallviolett in einem Wachs auf die Rückseite eines Schreibmaschinen-Kopierblattes, der sogenannten Matrize, aufgetragen. Die beschriftete Matrize wurde auf eine Trommel gespannt und das leicht mit Alkohol befeuchtete zu bedruckende Papier löste daraus winzige Farbwachspartikel ab und nahm diese auf. Mit dem alkoholbenetzten Papier konnten mehr als 200 gute Kopien der Vorlage hergestellt werden.[44]

Spurensicherung

Bearbeiten

Mit einem Spurensicherungspulver, zum Beispiel auf der Basis von Zinkcarbonat/Zinkhydroxid-Monohydrat oder Molybdänsulfid und Kristallviolett, können Fingerabdrücke auf nicht-porösen Gegenständen selbst nach dem Eintauchen in Wasser nachgewiesen werden. Die Anwendung erfolgt als Mischung aus Ethanol, Wasser, Phenol und Kristallviolett.[45] Beim Cyanacrylat-Verfahren, bei dem farblose Cyanacrylatdämpfe auf einem in den Dampfraum eingebrachten Gegenstand mit der Restfeuchte einer daktyloskopischen Spur polymerisieren, wird das entstehende Polymer zur Kontrastverstärkung mit Kristallviolett eingefärbt. Die Spurensicherung erfolgt fotografisch.[46]

Nährmedien

Bearbeiten
 
Gramnegative Klebsiella pneumoniae-Kolonien auf MacConkey-Agar

Ein Nährmedium ist ein festes, flüssiges oder halbfestes Medium, das dazu bestimmt ist, das Wachstum einer Population von Mikroorganismen oder Zellen zu unterstützen. Für das Wachstum verschiedener Zelltypen werden unterschiedliche Nährmedien verwendet, etwa Selektivmedien wie das VRB-Agar (Violet-Red-Bile-Agar) und Differentialmedien wie das MacConkey-Agar sowie Kombinationen davon. VRB-Agar wird für die Auszählung von gramnegativen coliformen Bakterien in Lebensmitteln und Milchprodukten verwendet. MacConkey-Agar ist ein Selektiv- und Differenzialmedium, das für das Wachstum gramnegativer Bakterien wie beispielsweise Klebsiella pneumoniae verwendet wird. Durch Zugabe von Kristallviolett zu VRB- und MacConkey-Agar wird das Wachstum grampositiver Bakterien gehemmt.[47]

Plaque-Assays

Bearbeiten
 
Ungefärbte virale Plaques nach Färbung der intakten Zellen

Plaque-Assays sind eine gängige Methode zur Bestimmung der Virenkonzentration, bei der Wirtszellen in Petrischalen infiziert werden. Dazu wird eine virushaltige Probe in verschiedenen Verdünnungen aufgetragen und mit einem halbfesten Medium wie Agar bedeckt, um eine unkontrollierte Ausbreitung der Virusinfektion zu verhindern. Eine virale Plaque bildet sich, nachdem ein Virus eine Zelle innerhalb der festen Schicht infiziert und lysiert, wodurch sich die Infektion auf benachbarte Zellen ausdehnt. Auf diese Weise entsteht ein Bereich lysierter Zellen, die virale Plaque, die umgeben ist von nicht infizierten, intakten Zellen. Die Plaque kann durch Anfärben der intakten Zellen mit einer Kristallviolettlösung im Vergleich zu den lysierten Zellen sichtbar gemacht werden.[48]

Gelelektrophorese

Bearbeiten

Gelgestützte DNA-Sequenzierungsverfahren basieren auf der Erzeugung von Populationen basenspezifisch terminierter DNA, die in einer anschließenden denaturierenden Polyacrylamid-Gelelektrophorese nach Größe aufgetrennt werden. Häufig verwendete Fluoreszenzreagenzien wie Ethidiumbromid erfordern eine UV-Bestrahlung zur Erzeugung einer Fluoreszenzbande im Agarosegel. Wird Kristallviolett als Alternative zu Fluoreszenzfarbstoffen verwendet, ist keine UV-Beleuchtung erforderlich und die UV-induzierte DNA-Zerstörung bei der in vitro-DNA-Klonierung wird vermieden. Die Empfindlichkeit kann durch die Verwendung einer Methylorange-Gegenfärbung und einer komplexeren Färbemethode weiter verbessert werden.[49]

Histologische Färbung

Bearbeiten
 
Staphylococcus aureus (Kokken, gram­positiv, blau-violett) und Escherichia coli (Stäbchen, gram­negativ, rosa)

Die Gram-Färbung ist eine Färbemethode zur Einteilung der Bakterienarten in zwei Gruppen, die grampositiven und die gramnegativen Bakterien. Im ersten Schritt wird dazu ein dünner Ausstrich einer Bakterienkultur zum Beispiel durch Hitze auf einem Objektträger fixiert. Im zweiten Schritt wird Kristallviolett in wässriger Lösung aufgetragen, wobei die Ionen die Zellwand und die Membran sowohl grampositiver als auch gramnegativer Bakterienzellen durchdringen. Grampositive Bakterien besitzen eine dicke Peptidoglycanschicht in der Zellwand, während gramnegative Bakterien eine dünnere Schicht haben. Im dritten Schritt bilden sich durch Zugabe von Iod im Cytoplasma und in den äußeren Zellschichten dunkelblaue Farbstoff-Charge-Transfer-Komplexe.[50] In einem weiteren Schritt werden durch Zugabe von dehydratisierend wirkendem Ethanol oder Aceton der Abstand zwischen den Peptidoglycanen verringert, so dass die Kristallviolett-Komplexe bei grampositiven Bakterien nicht von Ethanol oder Aceton ausgewaschen werden können und die dunkelblaue Färbung erhalten bleibt. Bei gramnegativen Bakterien wird dagegen der Farbstoffkomplex ausgewaschen. Im letzten Schritt werden die gramnegativen Bakterien mit Safranin T rosa gegengefärbt.[51]

Bei der Färbung nach Neisser handelt es sich um einen Test auf das Vorhandensein von in den Zellen gespeicherten Polyphosphaten mit einer Mischung aus Kristallviolett, Methylenblau und Chrysoidin-Y. Zudem können damit die für die biologische Phosphorelimination verantwortlichen Bakterien sichtbar gemacht werden.[52]

Bei oralen epithelialen Dysplasien und oralen Plattenepithelkarzinomen ist die Mitosezahl, das heißt die Anzahl der Mitosen pro 2 Quadratmillimeter, im Vergleich zur normalen Mundschleimhaut signifikant erhöht. Die Kristallviolettfärbung eignet sich als selektive Färbung für die Bestimmung der Mitosezahl besser als eine Hämatoxylin-Eosin-Färbung, wobei mit Kristallviolett die Metaphase die dabei am häufigsten beobachtete Phase der Mitose ist.[53]

Neben der Färbung mit Kongorot kann Amyloidmaterial aufgrund seiner metachromatischen Eigenschaften mittels Farbstoffen wie Kristallviolett identifiziert werden. Der optische Effekt wird durch die räumliche Ausrichtung der Farbstoffmoleküle zwischen den Amyloidfibrillen hervorgerufen.[54]

Zellviabilitätstests werden eingesetzt, um die Wirksamkeit von antimykotischen Therapeutika und Desinfektionsstrategien in vitro zu beurteilen. Diffusionsbasierte Verfahren verwenden neben anderen Farbstoffen Kristallviolett, das durch perforierte Zellmembranen in tote Zellen eindringen kann, wogegen lebende Zellen kaum gefärbt werden. Der Kristallviolett-Färbetest gehört zu den kolorimetrischen Tests.[55]

Medizinische Verwendung

Bearbeiten
 
Behandlung von Mundwinkel­entzündung mit Kristallviolett

Medizinisch wurde Kristallviolett lange Zeit, bis zur Entdeckung anderer wirksamer Antimykotika, zur Behandlung von Hautpilzerkrankungen (Mykosen), insbesondere Fußpilzen, sowie von Mundsoor und Mundwinkelentzündung verwendet.[56] Dazu wird es als Pyoktaninlösung (0,5–2 %) aufgepinselt. In der westlichen Welt wird es heute wegen der Einfärbung der Haut fast nur noch in der Naturheilkunde verwendet. Bei äußerlicher Anwendung sind bisher keine schwerwiegenden Nebenwirkungen bekannt geworden, bei oraler Verabreichung kann es zu gastrointestinalen Reizungen und bei intravenöser Injektion zu einer Verminderung der Leukozyten kommen.[57]

Nach Empfehlungen der WHO war Kristallviolett bis ins Jahr 2011 als essenzielles Medikament einzustufen.[58] Kristallviolett ist in Europa frei verkäuflich und auch die FDA, die US-Behörde für Lebens- und Arzneimittel, erlaubt den rezeptfreien Verkauf von Kristallviolett.[19]

Dermatologie

Bearbeiten
 
Atopisches Ekzem bei einem Kleinkind

In der pädiatrischen Dermatologie wird es nach wie vor bei Ausbrüchen des atopischen Ekzems eingesetzt, die durch grampositive Bakterien oder Dermatophyten verursacht werden. Die Besiedlung der Haut mit Staphylococcus aureus spielt möglicherweise eine Rolle in der Pathophysiologie des atopischen Ekzems. In einer klinischen Studie, bei der die betroffene Haut mit Kristallviolett behandelt wurde, konnte die Bakteriendichte sowohl bei geschädigter als auch bei unbeschädigter Haut deutlich reduziert werden. Die antibakterielle Therapie mit Kristallviolett reduzierte nicht nur Staphylococcus aureus, sondern auch den Schweregrad des Ekzems erheblich. In vitro zeigte Kristallviolett eine hohe antibakterielle Aktivität.[59]

Bei HIV-positiven Kindern und Heranwachsenden können Pilze der Gattung Candida orale Candidose verursachen und innere Organe befallen und schwere Erkrankungen auslösen. Kristallviolett war in mehreren Studien Nystatin, ein Polyen-Makrolacton, das als Antimykotikum zur Behandlung von Pilzinfektionen eingesetzt wird, in der klinischen Heilung überlegen.[60] In einer randomisierten kontrollierten Studie wurde entweder die alleinige Anwendung von Fluconazol oder die additive Wirkung der intravaginalen Anwendung von Kristallviolett zu einer oralen Einzeldosis von Fluconazol bei akuter vaginaler Candidose untersucht. Die Teilnehmerinnen beider Gruppen berichteten über eine hohe Zufriedenheit und es traten keine schwerwiegenden unerwünschten Nebenwirkungen auf. Die Anwendung von Kristallviolett führte zu einer kürzeren Heilungszeit, jedoch nicht zu einer höheren Heilungsrate.[61]

Als diagnostischer Test bei Pityriasis versicolor wird Kristallviolett auf den infizierten Bereich aufgetragen, wodurch die infizierten Bereiche im Vergleich zur nicht infizierten Haut hervorgehoben werden. Mit diesem Test kann Pityriasis versicolor von anderen Erkrankungen wie atopisches Ekzem, Vitiligo und Röschenflechte unterschieden werden.[62]

In einer retrospektiven Übersichtsarbeit wurden Fälle von Patienten über einen Zeitraum von zehn Jahren untersucht, bei denen Pyoderma gangraenosum diagnostiziert und mit Kristallviolett behandelt wurde. Eine 2%ige Kristallviolettlösung wurde einmal wöchentlich auf die betroffenen Stellen aufgetragen und mit einem kohäsiven Verband (englisch „Cohesive Bandage“ oder „Coban“) abgedeckt. Die Ergebnisse deuten darauf hin, dass eine Behandlung mit Kristallviolett als Ergänzung zur systemischen Therapie nützlich sein könnte, um die Wundheilung bei Patienten mit Pyoderma gangraenosum zu verbessern.[63]

Chagas-Krankheit

Bearbeiten
 
Trypanosoma cruzi Trypomastigot im Blut

Im Jahr 1953 entdeckten Ruth und Victor Nussenzweig, dass Kristallviolett den einzelligen Parasiten Trypanosoma cruzi in Blutkonserven abtötet. Trypanosoma cruzi, der Erreger der Chagas-Krankheit, wird von blutsaugenden Raubwanzen übertragen. Daher wird Kristallviolett in Blutbanken in endemischen Gebieten verwendet, um den Parasiten aus dem Blut zu entfernen, das für Bluttransfusionen verwendet wird.[64] Es liegen keine Berichte über akute toxische Nebenwirkungen nach Verabreichung großer Mengen von mit Kristallviolett behandeltem Blut vor, jedoch sind die Langzeitwirkungen von mit Kristallviolett behandeltem Blut weder beim Menschen noch bei Versuchstieren untersucht worden.[57]

Sonstige Anwendungen

Bearbeiten

Intravenös wurde es als 0,05%ige Lösung zur Behandlung von sekundären Lungenmykosen eingesetzt. Die intravenöse Anwendung führte zu einer raschen und massiven Abnahme der Sputummenge. Jedoch konnte die intravenöse Anwendung zu lokalen Venenthrombosen führen.[65]

Kristallviolett wurde zur Behandlung von Fadenwürmern wie dem Zwergfadenwurm verwendet, der sich im Darm des Menschen ansiedelt.[66] Es wurde ebenfalls zur Behandlung von Madenwürmern bei Kindern eingesetzt, selbst bei schwerem Befall.[67]

Wirkungsweise

Bearbeiten

Die genauen Wirkmechanismen von Kristallviolett sind nicht eindeutig geklärt. Kristallviolett besitzt unter anderem die Fähigkeit, die Aktivität der Nicotinamidadenindinucleotidphosphatoxidase zu hemmen und dadurch den Gehalt an Angiopoietin-2 zu senken, das die Gefäßdurchlässigkeit beeinflusst und eine wichtige Rolle bei der Tumorangiogenese spielt. Dies ist ein möglicher therapeutischer Mechanismus zur Bekämpfung von Krankheiten, die durch Angiopoietin-2 beeinflusst werden.[68]

Die antimikrobiellen Eigenschaften könnten mit der Fähigkeit von Kristallviolett zusammenhängen, das Redoxpotential zu verändern, was zur Schädigung der DNA oder mitochondrialer Fehlfunktion und damit zum Absterben der Mikroorganismen führt. Möglicherweise beruht die bakterizide Wirkung auch auf der Bildung von Komplexen mit der bakteriellen Zellwand und Störungen des Glutaminsäurestoffwechsels.[69] Weitere mögliche Effekte sind die photochemische Wirkung über die Bildung freier Radikale und die Unterdrückung der Proteinbiosynthese.[68]

Zu den möglichen antimykotischen Wirkmechanismen von Kristallviolett gehört die Unterdrückung des Biofilmwachstums und der Thioredoxin-Reduktase mit anschließendem Absterben des Pilzes. Kristallviolett in Konzentrationen von 2 Mikrogramm pro Milliliter verringerte die Phospholipase-, Peptidasen- und Keimschlauchbildung von Candida albicans. Bei Candida albicans lagen die Minimale Hemm-Konzentrationen MHK50 und MHK90 von Kristallviolett bei 0,25 beziehungsweise 0,5 Mikrogramm pro Milliliter.[68]

Tiermedizinische Verwendung

Bearbeiten
 
Zierfisch mit Ichthyophthiriose oder Weißpünktchenkrankheit

Kristallviolett ist für die Verwendung in der Aquakultur für die Zucht von Fischen, Muscheln, Krebsen und Algen in vielen Ländern nicht zugelassen. Für die Behandlung von Zierfischen zur Bekämpfung der Ichthyophthiriose oder Weißpünktchenkrankheit, eine durch Wimpertierchen verursachte Parasitose, ist es jedoch erhältlich.[70] Die Behandlung von für den menschlichen Verzehr bestimmten Tieren mit Kristallviolett ist aufgrund seiner toxikologischen Eigenschaften weltweit verboten.[5]

Eine randomisierte kontrollierte Studie in ländlichen Gebieten Ugandas zeigte, dass eine topische Behandlung mit den in der EU nicht mehr zugelassenen Präparaten Chlorfenvinphos, Dichlorvos und Kristallviolett hochwirksam gegen Tungiasis bei Schweinen ist. Dabei handelt es sich um eine Infektion mit dem Sandfloh Tunga penetrans.[71] In den 1930er Jahren wurde ein Schweinepest-Impfstoff aus dem von Fibrinogen befreitem Blut von mit Schweinepest infizierten Tieren und Kristallviolett hergestellt. Obwohl die Sicherheit und Wirksamkeit dieses Impfstoffs gering war, wurde er bis in die 1970er Jahre benutzt.[72][73]

Kristallviolett wird als Fungizid und als Bakterizid gegen grampositive Bakterien in Futtermitteln für Geflügel eingesetzt. Es hemmt die Aktivität und Infektiosität verschiedener Virusstämme, einschließlich der Newcastle-Krankheit und des Geflügelpestvirus. Bei Konzentrationen im Bereich von 0,05 bis 0,1 % im Endfutter konnte es nicht im Geflügelfleisch nachgewiesen werden. In hohen Konzentrationen von 2,5 bis 5,0 Gramm pro Kilogramm Körpergewicht wirkt Kristallviolett auf Geflügel toxisch.[74] In den USA ist die Anwendung bei lebensmittelliefernden Tieren seit Anfang der 1990er Jahre verboten, ebenso in Australien. In Kanada ist Kristallviolett als topisches Präparat zur Anwendung bei lebensmittelliefernden Tieren zugelassen, beispielsweise zur topischen Behandlung von Tinea corporis, zur Behandlung von Konjunktivitis und zur topischen Behandlung von Hautwunden. Die Verwendung von Kristallviolett in Futtermitteln zur Verhinderung von Schimmelpilzwachstum ist in Kanada jedoch verboten. Einige EU-Mitgliedstaaten haben einen Grenzwert von 0,5 Mikrogramm pro Kilogramm für Rückstände von Kristallviolett in international gehandelten Lebensmittelsendungen festgelegt, der auch in Kanada gilt.[75]

Toxikologie

Bearbeiten

Kristallviolett darf nicht ins Auge gelangen, da es dort schwere Schäden verursachen kann.[76] Ferner ist bei äußerlicher Anwendung eine Überdosierung zu vermeiden, da Kristallviolett, ebenso wie die verwandten und ähnlich verwendeten Triphenylmethanfarbstoffe Malachitgrün und Brillantgrün, zelltoxisch auf die Haut wirkt. Die beim Menschen beschriebenen toxischen Wirkungen wie Nasenbluten, Ausbildung eines allergischen Kontaktenzems, Übelkeit und andere Beschwerden beruhen auf Einzelfallberichten und wurden nicht in systematischen klinischen Studien überprüft.[23] Die Metabolisierung von Kristallviolett umfasst die N-Demethylierung, die Acetylierung, die Glucuronidierung und die Reduktion zu Leukokristallviolett.[4]

Im Anhang IV der Verordnung (EG) Nr. 1272/2008 (CLP) wurde Kristallviolett mit der Einstufung Carc. 2-H351, „kann vermutlich Krebs erzeugen“, aufgenommen. Liegt Michlers Keton in Konzentrationen größer als 0,1 % vor, ändert sich die Einstufung zu Carc. 1B-H350, „kann Krebs erzeugen“.[5] Seit November 2020 ist Kristallviolett in der Europäischen Union wegen seines krebserregenden Potentials über REACH Anhang XVII auf eine Konzentration von 50 mg/kg in einem homogenen Material begrenzt.[77] Kristallviolett erfüllt nur dann die Kriterien des REACH-Artikels 57 (a), wenn es Michlers Keton oder Michlers Base in einer Konzentration von größer oder gleich 0,1 % enthält. Reines Kristallviolett selbst gilt nicht als besonders besorgniserregender Stoff.[78]

Im Juni 2019 warnte die kanadische Gesundheitsbehörde Health Canada vor einer möglichen Krebsgefährdung durch Kristallviolett und empfahl, Anwendungen in der Tiermedizin zu stoppen.[79] Über den Safe Drinking Water and Toxic Enforcement Act of 1986 besteht in Kalifornien seit 23. November 2018 eine Kennzeichnungspflicht, wenn Kristallviolett in einem Produkt enthalten ist.[80]

Umweltrelevanz

Bearbeiten

Während der Herstellung und Verarbeitung gehen etwa 12 % der synthetischen Farbstoffe verloren. Wasser wird in jeder Phase der Textilverarbeitung verwendet, beispielsweise bei der Nassveredelung, beim Übertragen von Chemikalien auf Textilien und beim Waschen. Dies hat zur Folge, dass große Mengen gefärbten Abwassers anfallen. Wenn Kristallviolett ungeklärt in aquatischen Ökosysteme gelangt, beeinträchtigt es die photosynthetische Aktivität der Wasserpflanzen, was zu einer Verringerung des Gehalts an gelöstem Sauerstoff führt und somit letztlich den normalen Lebensprozess der Wasserflora und -fauna stört.[38] Für die Entfernung von Kristallviolett aus Abwasser wurden daher verschiedene physikalische, chemische und biologische Methoden vorgeschlagen. Zu den physikalischen Methoden zählen die Adsorption an modifizierten Chitosanen, Lignin und Nanocellulose.[81][82][83]

Als chemische Behandlungsmethoden wurden Systeme auf Basis der Fenton-Reaktion getestet.[84] Daneben wurden photochemische Methoden sowie die Ozonierung eingesetzt.[38] Kristallviolett wurde mit Hilfe eines Systems von manganoxidierenden Bakterien aus Bacillus sp. und Sphingobacterium sp. vollständig entfärbt.[85] Neben Bakterien wurden Abbaumechanismen über Hefen und Pilze getestet.[38]

Literatur

Bearbeiten
  • S. Mani, R.N. Bharagava: Exposure to Crystal Violet, Its Toxic, Genotoxic and Carcinogenic Effects on Environment and Its Degradation and Detoxification for Environmental Safety. In: P. de Voogt (Hrsg.): Reviews of Environmental Contamination and Toxicology. Springer International Publishing, Schweiz, 2016, Bd. 237, S. 71–104; doi:10.1007/978-3-319-23573-8_4.
Bearbeiten
Commons: Kristallviolett – Sammlung von Bildern, Videos und Audiodateien
Wiktionary: Kristallviolett – Bedeutungserklärungen, Wortherkunft, Synonyme, Übersetzungen

Einzelnachweise

Bearbeiten
  1. ↑ a b c d e f g Eintrag zu Kristallviolett in der GESTIS-Stoffdatenbank des IFA, abgerufen am 20. Januar 2022. (JavaScript erforderlich)
  2. ↑ Eintrag zu [4-[4,4′-bis(dimethylamino)benzhydrylidene]cyclohexa-2,5-dien-1-ylidene]dimethylammonium chloride im Classification and Labelling Inventory der Europäischen Chemikalienagentur (ECHA), abgerufen am 1. Februar 2016. Hersteller bzw. Inverkehrbringer können die harmonisierte Einstufung und Kennzeichnung erweitern.
  3. ↑ a b c d Patent US290891: Manufacture of Dye-Stuff or Coloring Matter. Veröffentlicht am 25. Dezember 1883, Erfinder: Alfred Kern.‌
  4. ↑ a b Ausschuss für Gefahrstoffe: C.I. Basic Violet 3 (Kristallviolett). Stand Juli 1999 (online), abgerufen am 7. Mai 2024.
  5. ↑ a b c d BfR-Kommission für pharmakologisch wirksame Stoffe und Tierarzneimittel: Toxikologische Einschätzung von Kristallviolett. In: Empfehlung des Bundesinstituts für Risikobewertung. 16. Mai 2019, abgerufen am 11. April 2024.
  6. ↑ S. J. Culp, F. A. Beland: Malachite Green: A Toxicological Review. In: Journal of the American College of Toxicology. 15.3, 1996, S. 219–238, doi:10.3109/10915819609008715.
  7. ↑ C. Lauth: On the new aniline dye, Violet de Paris. In: Laboratory. 1, 1867, S. 138–139.
  8. ↑ W. M. Gardner: The British coal-tar industry: its origin, development, and decline. Lippincott, Philadelphia, S. 173, (online).
  9. ↑ a b C. Reinhardt, A. S. Travis: Heinrich Caro and the creation of modern chemical industry. Kluwer Academic, Dordrecht, 2000, ISBN 0-7923-6602-6, S. 208–209.
  10. ↑ M. Titford: George Grubler and Karl Hollborn: Two Founders of the Biological Stain Industry. In: Journal of Histotechnology. 16.2, 1993, S. 155–158, doi:10.1179/his.1993.16.2.155.
  11. ↑ M. Titford: Comparison of historic Grübler dyes with modern counterparts using thin layer chromatography. In: Biotechnic and Histochemistry. 82.4–5, 2007, S. 227–234, doi:10.1080/10520290701714005.
  12. ↑ Ernst Mutschler: Arzneimittel – Erfolge, Mißerfolge, Hoffnungen. In: Reimar Lüst u. a. (Hrsg.): Beobachtung, Experiment und Theorie in Naturwissenschaft und Medizin. Wissenschaftliche Verlagsgesellschaft, Stuttgart, 1987, ISBN 3-8047-0912-5, S. 287–307.
  13. ↑ H. J. Conn: An Investigation of American Gentian Violets Report of Committee on Bacteriological Technic. In: Journal of Bacteriology. 7.5, 1922, S. 529–536, doi:10.1128/jb.7.5.529-536.1922.
  14. ↑ J. Stilling: Anilin Farbstoffe als Antiseptica und ihre Anwendung in der Praxis. 1890.
  15. ↑ R. L. Berrios, J. L. Arbiser: Novel antiangiogenic agents in dermatology. In: Archives of Biochemistry and Biophysics. 508.2, 2011, S. 222–226, doi:10.1016/j.abb.2010.12.016, PMID 21172300.
  16. ↑ Paulo N. Correa, Alexandra N. Correa: Wilhelm Reich's Claim of the Heterogenesis of Eukaryotic Amoebae. In: Journal of Biophysics, Hematology and Oncology. 1.1, 2010, S. 1–17, (online).
  17. ↑ W. von Drigalski, H. Conradi: Ueber ein Verfahren zum Nachweis der Typhusbacillen. In: Zeitschrift für Hygiene und Infektionskrankheiten. 39.1, 1902, S. 283–300, doi:10.1007/bf02140310.
  18. ↑ J. W. Churchman: The selective bactericidal action of Gentian Violett. In: Journal of Experimental Medicine. 16.2, 1912, S. 221–247, doi:10.1084/jem.16.2.221, PMID 19867569.
  19. ↑ a b A. M. Maley, J. L. Arbiser: Gentian Violet: a 19th century drug re‐emerges in the 21st century. In: Experimental Dermatology. 22.12, 2013, S. 775–780, doi:10.1111/exd.12257, PMID 24118276.
  20. ↑ Patent DE26016: Verfahren zur Darstellung von violetten Farbstoffen durch Einwirkung von Chlorkohlenoxyd (Phosgen) auf tertiäre aromatische Monamine in Gegenwart von Aluminiumchlorid oder ähnlich wirkenden Condensationsmitteln. Angemeldet am 21. August 1883, veröffentlicht am 2. Februar 1884, Anmelder: Badische Anilin- und Sodafabrik.‌
  21. ↑ Heinrich Zollinger: Color Chemistry: Syntheses, Properties, and Applications of Organic Dyes and Pigments. 3. Auflage. WILEY-VCH Verlag, Weinheim 2003, ISBN 3-906390-23-3, S. 106 (eingeschränkte Vorschau in der Google-Buchsuche).
  22. ↑ a b Dean Thetford: Triphenylmethane and related Dyes. In: Kirk-Othmer Encyclopedia of Chemical Technology. 1. Auflage. Wiley, 2001, S. 1–21, doi:10.1002/0471238961.2018091620080520.a01.pub2.
  23. ↑ a b c T. Gessner, U. Mayer: Triarylmethane and Diarylmethane Dyes. In: Ullmann’s Encyclopedia of Industrial Chemistry. Wiley, 2000, S. 425–478, doi:10.1002/14356007.a27_179.
  24. ↑ Patent DE2334918: Verfahren zur Herstellung basischer Farbstoffe durch katalytische Oxidation. Angemeldet am 10. Juli 1973, veröffentlicht am 30. Januar 1975, Anmelder: BASF AG, Erfinder: Helmut Kast.‌
  25. ↑ IARC Working Group on the Identification of Carcinogenic Hazards to Humans: Gentian Violet, Leucogentian Violet, Malachite Green, Leucomalachite Green, and CI Direct Blue 218. IARC Monographs on the Identification of Carcinogenic Hazards to Humans, No. 129, 2022, ISBN 978-92-832-0169-4 (online).
  26. ↑ a b E. Q. Adams, Ludwig Rosenstein: The Color and Ionization of Crystal Violet. In: Journal of the American Chemical Society. 36.7, 1914, S. 1452–1473, doi:10.1021/ja02184a014.
  27. ↑ G. N. Lewis, T. T. Magel, D. Lipkin: Isomers of Crystal Violet Ion. Their Absorption and Re-emission of Light. In: Journal of the American Chemical Society. 64.8, 1942, S. 1774–1782, doi:10.1021/ja01260a009.
  28. ↑ P. Sharma, N. Sohal, B. Maity: Encapsulation and release of non-fluorescent crystal violet confined in bile-salt aggregates. In: RSC Advances. 11.18, 2021, S. 10912–10921, doi:10.1039/d0ra06599d.
  29. ↑ M. V. Cañamares, C. Chenal, R. L. Birke, J. R. Lombardi: DFT, SERS, and Single-Molecule SERS of Crystal Violet. In: The Journal of Physical Chemistry C. 112.51, 2008, S. 20295–20300, doi:10.1021/jp807807j.
  30. ↑ Ralf Martens-Menzel, Lena Harwardt, Hanns-Jürgen Krauss (Hrsg.): Gerhart Jander, Karl-Friedrich Jahr: Maßanalyse. De Gruyter, Berlin, Boston, 2022, ISBN 978-3-11-071074-8, S. 120–122.
  31. ↑ Arnold F. Holleman, Friedrich Richter (Hrsg.): Lehrbuch der Organischen Chemie. DeGruyter, Berlin, Boston, Reprint 2020, ISBN 978-3-11-232262-8, S. 415.
  32. ↑ L. Dayo Felix: Kinetic Study of the Discoloration of Crystal Violet Dye in Sodium Hydroxide Medium. In: Journal of Chemistry and Applied Chemical Engineering. 02.01, 2018, doi:10.4172/2576-3954.1000115.
  33. ↑ G. J. Hucker, H. J. Conn: Methods of Gram Staining. New York Agricultural Experiment Station. Technical Bulletin No. 93. The Station, Geneva, N.Y., 1923. (online).
  34. ↑ B. D. Spangler, P. Vanysek, I. C. Hernandez, R. D. Rogers: Structure of crystal violet tetraphenylborate. In: Journal of Crystallographic and Spectroscopic Research. 19.3, 1989, S. 589–596, doi:10.1007/bf01185394.
  35. ↑ Pigment Violet 39. In: dyestuffintermediates.com. Abgerufen am 23. April 2024.
  36. ↑ Ethyl Green - Dyes for Histology | StainsFile. In: stainsfile.com. Abgerufen am 28. April 2024 (englisch).
  37. ↑ E. Weitz, L. Müller, K. Dinges: Über die Radikale der Triphenylmethan‐Farbstoffe. In: Chemische Berichte. 85.9–10, 1952, S. 878–885, doi:10.1002/cber.19520850908.
  38. ↑ a b c d e S. Mani, R.N. Bharagava: Exposure to Crystal Violet, Its Toxic, Genotoxic and Carcinogenic Effects on Environment and Its Degradation and Detoxification for Environmental Safety. In: P. de Voogt (Hrsg.): Reviews of Environmental Contamination and Toxicology. Band 237, Springer International Publishing, Schweiz, 2016, doi:10.1007/978-3-319-23573-8_4, S. 71–104.
  39. ↑ Eintrag zu Kristallviolett. In: Römpp Online. Georg Thieme Verlag, abgerufen am 8. Mai 2024.
  40. ↑ J. Griffiths: Funktionelle Farbstoffe. Ein neuer Trend in der Farbstoffchemie. In: Chemie in unserer Zeit. 27.1, 1993, S. 21–31, doi:10.1002/ciuz.19930270104.
  41. ↑ Patent US4877495: Electrolytic Coloring of anodized Aluminum. Veröffentlicht am 31. Oktober 1989, Erfinder: Willi Buchmeier, Dieter Brodalia.‌
  42. ↑ A. N. Assal: Review on the Identification Methods of Laboratory Mice, Rats, Rabbits, and Guinea pigs. In: Scandinavian Journal of Laboratory Animal Sciences. 15.1, 2019, S. 19–31, doi:10.23675/SJLAS.V15I1.697.
  43. ↑ Patent US3609093A: Photochromic radiation dosimeter. Veröffentlicht am 28. September 1971, Erfinder: Larry A Harrah.‌
  44. ↑ James A. Kent: Riegel’s Handbook of Industrial Chemistry. Van Nostrand Reinhold, New York, Cincinnati, Toronto, London, Melbourne, 1974, ISBN 0-442-24347-2, S. 671.
  45. ↑ R. Rohatgi, G. S. Sodhi, A. K. Kapoor: Small particle reagent based on crystal violet dye for developing latent fingerprints on non-porous wet surfaces. In: Egyptian Journal of Forensic Sciences. 5.4, 2015, S. 162–165, doi:10.1016/j.ejfs.2014.08.005.
  46. ↑ Ingo Wirth (Hrsg.): Kriminalistik-Lexikon. Hüthig Jehle Rehm, 2011, Heidelberg, München, Landsberg, Frechen, Hamburg, ISBN 978-3-7832-0804-7, S. 245–246.
  47. ↑ J. A. Van Tassell u. a.: Evaluation of various selective media for the detection of Pseudomonas species in pasteurized milk. In: Journal of Dairy Science. 95.3, 2012, S. 1568–1574, doi:10.3168/jds.2011-4958.
  48. ↑ A. Baer, K. Kehn-Hall: Viral Concentration Determination Through Plaque Assays: Using Traditional and Novel Overlay Systems. In: Journal of Visualized Experiments. 93, 2014, doi:10.3791/52065.
  49. ↑ Y. I. Yang U. a.: Counterion-dye staining method for DNA in agarose gels using crystal violet and methyl orange. In: Electrophoresis. 22.5, 2001, S. 855–859, PMID 11332752.
  50. ↑ A. A. Paray, M. Singh, M. Mir: Gram Staining: A Brief Review. In: International Journal of Research and Review. 10.9, 2023, S. 336–341, doi:10.52403/ijrr.20230934.
  51. ↑ Nishant Tripathi, Amit Sapra: Gram staining. In: StatPearls [Internet]. Treasure Island, StatPearls Publishing, 2024, PMID 32965827, (online).
  52. ↑ Dick H. Eikelboom: Process Control of Activated Sludge Plants by Microscopic Investigation. IWA Publishing, 2000, ISBN 978-1-900222-29-7, S. 15–18.
  53. ↑ K. Jadhav, B. Ahmed Mujib, N. Gupta: Crystal violet stain as a selective stain for the assessment of mitotic figures in oral epithelial dysplasia and oral squamous cell carcinoma. In: Indian Journal of Pathology and Microbiology. 55.3, 2012, S. 283–287, doi:10.4103/0377-4929.101731.
  54. ↑ D. Real de Asua u. a.: Systemic AA amyloidosis: epidemiology, diagnosis, and management. In: Clinical Epidemiology. 2014, S. 369, doi:10.2147/clep.s39981.
  55. ↑ S. Kamiloglu, G. Sari, T. Ozdal, E. Capanoglu: Guidelines for cell viability assays. In: Food Frontiers. 1.3, 2020, S. 332–349, doi:10.1002/fft2.44.
  56. ↑ Gentian Violet (Topical Route) Proper Use - Mayo Clinic. In: mayoclinic.org. 1. Februar 2024, abgerufen am 10. April 2024 (englisch).
  57. ↑ a b R. Docampo, S. N. J. Moreno: The Metabolism and Mode of Action of Gentian Violet. In: Drug Metabolism Reviews. 22,2–3, 1990, S. 161–178, doi:10.3109/03602539009041083, PMID 2272286.
  58. ↑ WHO Model Lists of Essential Medicines, März 2010, Rubrik 13.2 (Anti-infective medicines) (englisch: PDF; 424 kB)
  59. ↑ K. Brockow u. a.: Effect of Gentian Violet, Corticosteroid and Tar Preparations in Staphylococcus-aureus-Colonized Atopic Eczema. In: Dermatology. 199.3, 1999, S. 231–236, doi:10.1159/000018253, PMID 10592403.
  60. ↑ E. D. Pienaar, T. Young, H. Holmes: Interventions for the prevention and management of oropharyngeal candidiasis associated with HIV infection in adults and children. In: Cochrane Database of Systematic Reviews. 3, 2006, doi:10.1002/14651858.CD003940.pub2.
  61. ↑ C. Chayachinda u. a.: Effect of intravaginal gentian violet for acute vaginal candidiasis treated with a single dose oral fluconazole: a randomised controlled trial. In: Journal of Obstetrics and Gynaecology. 42.6, 2022, S. 2190–2196, doi:10.1080/01443615.2022.2035336, PMID 35253598.
  62. ↑ N. Prabha, R. Arora, S. Ganguly, N. Chhabra: Gentian violet: Revisited. In: Indian Journal of Dermatology, Venereology and Leprology. 86.5, 2020, S. 600–603, doi:10.4103/ijdvl.ijdvl_579_19.
  63. ↑ K. M. Stiff u. a.: Gentian violet for pyoderma gangrenosum: a retrospective chart review. In: Dermatology Online Journal. 26.1, 2020, PMID 32155035.
  64. ↑ D. Steverding: The history of Chagas disease. In: Parasites and Vectors. 7.1, 2014, S. 317, doi:10.1186/1756-3305-7-317.
  65. ↑ L. Heilmeyer, R. Schoen, E. Galnzmann, B. de Rudder (Hrsg.): Ergebnisse der Inneren Medizin und Kinderheilkunde. Springer, Berlin, Göttingen, Heidelberg, 1957, ISBN 978-3-642-94688-2, S. 480.
  66. ↑ S. Denman, S. Jameel, J. Hay, J. K. Sugden: Photostability of Crystal Violet (CI 42555). In: Dyes and Pigments. 30.1, 1996, S. 67–72, doi:10.1016/0143-7208(95)00067-4.
  67. ↑ Rodney C. Jung, Paul C. Beaver: Treatment of enterobiasis (pinworm infestation) with diphenanR, egressinR and gentian violet. In: Pediatrics. 11.6, 1953, S. 611–616, PMID 13073294.
  68. ↑ a b c A. Pona, E. Y. Quan, A. Cline, S. R. Feldman: Review of the use of gentian violet in dermatology practice. In: Dermatology Online Journal. 26.5, 2020, doi:10.5070/d3265048772, PMID 32621695.
  69. ↑ J. Dragan, S. Michalak: Gentian Violet: What we know and what is ahead of us. In: Acta Poloniae Pharmaceutica – Drug Research. 76.3, 2019, S. 389–396, doi:10.32383/appdr/102482.
  70. ↑ Center for Food Safety, Applied Nutrition: Laboratory Information Bulletin (LIB) 4395: Analyses of Crystal Violet & Brilliant Green | FDA. In: fda.gov. 21. September 2018, abgerufen am 10. April 2024 (englisch).
  71. ↑ F. Mutebi u. a.: Successful Treatment of Severe Tungiasis in Pigs Using a Topical Aerosol Containing Chlorfenvinphos, Dichlorphos and Gentian Violet. In: A. Taylan Ozkan (Hrsg.): PLOS Neglected Tropical Diseases. 10.10, 2016, S. e0005056, doi:10.1371/journal.pntd.0005056, PMID 27727268.
  72. ↑ S. Blome, C. Moß, I. Reimann, P. König, M. Beer: Classical swine fever vaccines—State-of-the-art. In: Veterinary Microbiology. 206, 2017, S. 10–20, doi:10.1016/j.vetmic.2017.01.001.
  73. ↑ A. J. de Smit: Laboratory diagnosis, epizootiology, and efficacy of marker vaccines in classical swine fever: A review. In: Veterinary Quarterly. 22.4, 2000, S. 182–188, doi:10.1080/01652176.2000.9695054, PMID 11087126.
  74. ↑ A. Kamyab, E. Mcgill, J. D. Firman: The use of hexamethyl-p-rosaniline chloride as an ingredient in poultry feed. In: World’s Poultry Science Journal. 65.3, 2009, S. 475–480, doi:10.1017/s0043933909500336.
  75. ↑ Holly Erdely, Pascal Sanders: Gentian violet. In: Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives: Residue Evaluation of certain veterinary Drugs. 78th Meeting 2013, FAO/WHO 2014, ISBN 978-92-5-108301-7, S. 42–43.
  76. ↑ B. Ballantyne, M. F. Gazzard, D. W. Swanston: Proceedings: Eye damage caused by crystal violet. In: British Journal of Pharmacology. 49.1, 1973, S. 181P–182P, PMID 4787555.
  77. ↑ Verordnung (EU) 2018/1513 (PDF)
  78. ↑ Liste der für eine Zulassung in Frage kommenden besonders besorgniserregenden Stoffe - ECHA. In: echa.europa.eu. Abgerufen am 23. April 2024.
  79. ↑ Health Canada warns Canadians of potential cancer risk associated with gentian violet - Canada.ca. In: recalls-rappels.canada.ca. 12. Juni 2019, abgerufen am 2. April 2024 (englisch).
  80. ↑ Gentian Violet. California Office of Environmental Health Hazard Assessment, 23. November 2018, abgerufen am 1. Juni 2022 (englisch).
  81. ↑ Asitha T. Cooray, Kavindya Weerasinghe, Samantha Ranaweera: Applications of Chitosan-and Chitin-Based Biomaterials in Cationic Dye Removal. In: Subramanian Senthilkannan Muthu, Ali Khadir (Hrsg.): Textile Wastewater Treatment. Sustainable Bio-nano Materials and Macromolecules. Band 1, Springer Nature, Singapore, 2022, ISBN 978-981-19-2831-4, S. 36.
  82. ↑ Md. Din Islam, M. K. Mohammad Ziaul Hyder, Md. Masudur Rhaman, Sajjad Husain Mir: Application of Lignin-Based Biomaterials in Textile Wastewater. In: Subramanian Senthilkannan Muthu, Ali Khadir (Hrsg.): Textile Wastewater Treatment. Sustainable Bio-nano Materials and Macromolecules. Band 1, Springer Nature, Singapore, 2022, ISBN 978-981-19-2831-4, S, 82–87.
  83. ↑ Swarnalatha Venkatanarasimhan, D. Gangadharan, Thilagavathy Palanisamy: Cellulose Nanocrystal as a New Promising Candidate in Textile Wastewater Treatment. In: Subramanian Senthilkannan Muthu, Ali Khadir (Hrsg.): Textile Wastewater Treatment. Sustainable Bio-nano Materials and Macromolecules. Band 1, Springer Nature, Singapore, 2022, ISBN 978-981-19-2831-4, S, 125.
  84. ↑ F. Rehman u. a.: Degradation of Crystal Violet Dye by Fenton and Photo-Fenton Oxidation Processes. In: Zeitschrift für Physikalische Chemie. 232.12, 2018, S. 1771–1786, doi:10.1515/zpch-2017-1099.
  85. ↑ D. Bharathi u. a.: Microbial approaches for sustainable remediation of dye-contaminated wastewater: a review. In: Archives of Microbiology. 204.3, 2022, S. 1–11, doi:10.1007/s00203-022-02767-3.
Abgerufen von „https://de.wikipedia.org/w/index.php?title=Kristallviolett&oldid=248031644“